Apuntes de Análisis Clinicos

Como pude comprobar, mimi me pidió que pusiera un enlace para dicho evento. Espero que les guste y que aprendan algo más para poder comprobar a aquellas personas que padecen esta enfermedad.

Saludos

Día mundial del Parkinson

Fecha y hora: viernes, 11 de abril de 2008 a las 0:00 Lugar: Mundial Ver este evento en Windows Live

¿Qué significa tener salud?

La salud es un estado de completo bienestar físico y mental. La salud no es únicamente ausencia de enfermedad, sino un adecuado equilibrio entre las condiciones físicas, mentales, culturales y sociales de los seres humanos.

Debido a la importancia y necesidad de que todos los países trabajen en prevenir, ayudar y conservar o restituir la salud, las Naciones Unidas crearon en 1945 la Organización Mundial de la Salud (OMS). Esta organización internacional trabaja para mejorar la salud física y mental de los individuos. Además, hace hincapié en la necesidad de que todos los países establezcan sistemas que tengan como fin ayudar a prevenir, conservar o restituir la salud. Sin un compromiso de los países por mejorar sus sistemas de salud y aumentar las inversiones en salud pública, no es posible que la población afronte riesgos para la salud tan graves como las epidemias, los desatres naturales, los problemas nutricionales o los accidentes.

Celebrar los avances en salud

Las últimas décadas han visto grandes logros históricos en materia de salud, como por ejemplo la erradicación de la viruela en 1980 y la eliminación de la poliomielitis en América Latina en 1994. Además, de 1980 a 1990 UNICEF y la OMS se esforzaron por lograr aumentar del 5 al 80 % la cobertura mundial de inmunización contra seis enfermedades mortales. La vacunación los niños, las niñas y sus madres es uno de los factores que han conseguido que en 2008 la cifra de mortalidad infantil del mundo baje, por primera vez en la historia de los 10 millones.

Sin embargo las últimas décadas también han visto el surgimiento de nuevas amenazas para la salud de millones de personas en el mundo.

 - La pandemia del VIH/SIDA supone un peligro no sólo para los millones de personas en riesgo de contraer la enfermedad, sino también para el propio sostenimiento económico y social de muchas comunidades e incluso países que ven diezmada su población a causa del SIDA.

- El cambio climático y las crisis medioambientales superan la capacidad de muchos países para hacer frente a las catástrofes naturales que se suceden unas tras otras. Más allá de los problemas de salud originados por estas catástrofes, hay otros problemas medioambientales como la contaminación y la degradación de los ecosistemas, que perjudican la salud de millones de personas, intoxican al ganado y la pesca y reducen la calidad de los cultivos destinados al consumo.

- Los países industrializados están viendo como aumenta la preocupación por cuestiones de salud que apenas se conocían hasta hace unos años. Sobre todo dolencias asociadas al estilo de vida de los países más ricos, como el sobrepeso, la anorexia, el aumento de la demanda de operaciones estéticas entre niños y adolescentes o enfermedades asociadas al proceso de envejecimiento.

¿Por qué es necesario dedicar un día a la salud?

Cada año, para celebrar el Día Mundial de la Salud, la OMS selecciona un nuevo tema que resalta aspectos de la salud pública de interés mundial. De igual forma, cada año en este día, se llevan a cabo en todo el mundo una serie de actividades y eventos para reflexionar sobre las carencias, las necesidades y los avances que ha habido en la materia.

El objetivo de este día mundial es reclamar que la salud, que es un derecho de todo ser humano, no se convierta en un privilegio. Además, el día de la salud logra unir a gente de todo el mundo que se moviliza en torno a actividades que logran un mayor reconocimiento de los temas de salud en la sociedad y en los gobiernos.

Cita

DÍA MUNDIAL DE LA SALUD 2008

Organizado por: OMS Fecha y hora: lunes, 07 de abril de 2008 a las 0:00 Lugar: Mundial Ver este evento en Windows Live

I.- Líquidos Cefaloraquídeo (LCR)

El líquido cefalorraquídeo o cerebroespinal, conocido como LCR, es un líquido que baña el cerebro y la médula espinal. Circula por el espacio subaracnoideo, los ventrículos cerebrales y el canal medular central.

El LCR es producido en un 70% en los plexos coroideos de los cuatro ventrículos cerebrales, sobre todo los laterales y 30% en el epéndimo a razón de 0.35ml/minuto o 500 cc/24 horas. La eliminación del líquido cefalorraquídeo se lleva a cabo a través de las vellosidades aracnoideas, proyección de las células de la aracnoides sobre los senos vasculares que alberga la duramadre. Estos senos desembocarán directamente en el torrente sanguíneo, en la región más anterior del cerebro está el espacio subaracnoideo de los lóbulos olfatorios; que se continúa con un espacio alrededor de los nervios olfatorios (por lo tanto, queda muy cerca de la mucosa olfatoria y el espacio aéreo de la nariz); desde esta región pasa a los ganglios linfáticos.

1. Funciones

El líquido cefalorraquídeo tiene tres funciones vitales importantes:

- Mantener flotante el encéfalo, actuando como colchón o amortiguador, dentro de la sólida bóveda craneal. Por lo tanto, un golpe en la cabeza moviliza en forma simultánea todo el encéfalo, lo que hace que ninguna porción de éste, sea contorsionada momentáneamente por el golpe.

- Servir de vehículo para transportar los nutrientes al cerebro y eliminar los desechos.

- Fluir entre el cráneo y la medula espinal para compensar los cambios en el volumen de sangre intracraneal, manteniendo una presión constante (la cantidad de sangre dentro del cerebro).

2. Composición

Se fabrica en los plexos coroideos de los ventrículos a partir del plasma (es un filtrado del pasma) teniendo una composición parecida:

- Proteínas: No pasarán todas (el LCR tiene muy pocas proteínas 15-45mg/dl) tiene en mayor cantidad proteínas más pequeñas como la albúmina, transferrina, etc. Dentro del propio SNC se pueden fabricar proteínas más grandes como las inmunoglobulinas.

- La glucosa: Proviene del plasma (alrededor del 60% de la glucosa plasmática)

- Iones: El Na⁺, K⁺, Cl^-, Fe, creatinina (con niveles más bajos que en el plasma) no se les de valor porque su determinación no se usa en LCR.

- Ac. Láctico: Elevado en caso de metabolismo anaerobio de la glucosa del SNC. Cuando las neuronas entran en el metabolismo anaerobio puede producir lesiones como parálisis.

- Células: Hematíes (10/mm³), leucocitos (<5/mm³ y los niños hasta 5) para considerarse normales deben ser linfocitos mononucleares si aparecen polinucleares debemos sospechar.

3. Toma de muestras

La muestra de L.C.R. debe ser obtenida por un médico entrenado en la técnica de punción lumbar ya que es una técnica muy dolorosa para el paciente.

El procedimiento seguido para la toma de muestras es:

1) El paciente debe acostarse de lado con las rodillas encogidas hacia el abdomen y la barbilla pegada al tórax. Debe tomar esta posición para que no se produzca el enclavamiento del bulbo raquídeo en las primeras vértebras debido a la disminución de la presión.

2) Lavar la región lumbar del paciente con agua y jabón.

3) Realizar asepsia de la piel rigurosa ya que se pueden arrastrar gérmenes desde la piel. Para ello desinfectamos primero con alcohol al 70% y después con povidona iodada mediante la realización de movimientos concéntricos que van desde el lugar donde se realiza la punción hacia fuera. Esperar tiempo de latencia del antiséptico.

4) Proceder a la punción lumbar con técnica aséptica. La punción se realiza entre la 3 y 4 vértebra lumbar. Mientras se realiza la punción debemos estar midiendo continuamente la presión del líquido espinal.

5) Recolectar el L.C.R. en tres frascos estériles. Utilizar el segundo frasco para el estudio microbiológico ya que el primero tiene más posibilidades de contaminación.

6) La cantidad de L.C.R. afecta directamente la sensibilidad del diagnóstico bacteriológico. En general, cantidades de 1-3 ml. de LCR para estudio bacteriológico, son adecuadas.

4. Análisis de LCR

A veces nos llega al laboratorio una muestra muy pequeña (se intentarán sacar 3 tubos) del cual deberemos hacer alícuotas para:

- Microbiología: Se procesan al momento realizando un gran y una siempre. En caso de no ser así se conservarían en la estufa durante unas pocas horas

- Bioquímica: El procesamiento también es instantáneo y en caso de no ser así deberemos guardarlo en la nevera. En el caso del estudio bioquímico nos pueden llegar dos tubos de LCR, de ser así debemos seguir el siguiente protocolo:

          o Tubo 1: Sirve para el recuento de células

          o Tubo 2: Se centrifuga y se realizan de él las pruebas bioquímicas.

Cuando el LCR llega al laboratorio y lo vamos a analizar debemos tener en cuenta que debemos seguir los siguientes pasos para su investigación:

- Observación macroscópica frente a un fondo blanco

          o Turbidez: Se compara el LCR con agua y se mide con cruces. Normalmente hay turbidez cuando hay infección (ojo eso no implica que no pueda haber infección sin turbidez.)

          o Color: Se pueden producir dos patologías

                    § Sangre: Debido a una hermorragia interna o de la punción

                    § Xantocromía: Aparición de un líquido transparente y de color amarillento-anaranjado muy suave que se observa con los reflejos del tubo. Esto indica una hemorragia del SNC pasada o también por causa de una ictericia.

- Recuento de células en cámara de recuento (mm³)

          o Hematíes

          o Leucocitos

- Pruebas bioquímicas: Para ello realizamos una centrifugación del LCR

          o Proteínas

                    § Con ácido tricloroacético a través de la turbidimetría.

                    § Azul de Camasi parecido al verde de bromocresol pero para todas las proteínas

                    § Pandi es un método cualitativo en el cual añadimos un reactivo que produce una flaculación de las proteínas. Después leemos con contrainmunoelectroforesis.

                    § Biuret: No tiene sensibilidad por lo que para realizarlo por este método deberemos hacer un concentrado de proteínas

                    § Electroforesis: Se realiza previa a la concentración de proteínas. En su mayoría proceden del plasma por lo que se verán aumentadas cuando aumenten la permeabilidad de la pared vascular (inflamaciones). El índice de mide la proporción en LCR entre IgG y albúmina para diferenciar si las proteínas vienen de la filtración del plasma o son fabricadas en el LCR (IgG) ya que si están elevadas estarían producidas en el SNC.

            o Glucosa: con la glucosa oxidasa

            o Ac. Láctico

- Observación microscópica (observación de leucocitos elevados)

            o Tinción

            o Recuento y distinción de los diferentes leucocitos (linfocitos y polimorfonucleares) ya que producen diferentes infecciones.

Es recomendable hacerle al paciente pasado una hora de la extracción una determinación de la glucemia y un hemocultivo.

II.- Semen

Este líquido es importante en el laboratorio debido a las pruebas que actualmente se realizan de fertilidad.

El semen es una secreción que llevan los espermatozoides suspendidos en un líquido, el líquido seminal.

1. Funciones

La función del líquido seminal es la de nutrir y proteger a los espermatozoides del medio ácido del aparato genital femenino.

2. Composición

Su composición es fundamentalmente de fructosa que es el alimento principal de los espermatozoides. Los órganos que intervienen en la formación del líquido seminal son:

- Testículos: Forman los espermatozoides y generan la célula germinal.

- Glándulas seminales: Se encuentra en la pared posterior de la vejíga (vesículas seminales). Formando la mayor parte de la secreción seminal que contiene fructosa, ác. Ascórbico y líquido ascítico.

- Próstata: Genera un 20% del volumen del líquido seminal que contiene fosfatasa ácida prostática, enzimas proteolíticos que favorece la movilidad de los espermatozoides y tiene un pH de 6,5 para equilibrar la acidez vaginal.

3. Toma de muestras

Hay que recoger el producto total de la eyaculación en un recipiente estéril templado (el frío inmoviliza los espermatozoides). Debemos coger el producto total de la eyaculación ya que normalmente sale fraccionado en tres partes:

- Secreción de las glándulas uretrales

- Secreción de espermatozoides

- Secreción del líquido seminal

La muestra debe ser analizado antes de 30 minutos después de la recogida y debe haber un período de abstinencia de 2-3 días.

4. Análisis

Al laboratorio antes de analizar la muestra nos deben de llegar los siguientes datos:

- Fecha

- Tiempo de la eyaculación al examen

- Días de abstinencia

- Días febriles

Una vez que tenemos estos datos podemos empezar el examen de semen:

- Examen macroscópico

          o Aspecto: Coágulo viscoso de aspecto blanquecino y turbio

          o Volumen: Es muy variable, lo normal es de 1,5-5 ml. Es importante saber que no existe relación con la fertilidad.

          o pH: Se mida con una tira de papel especial que mide variaciones de 6,5-8,5 ya que el pH del semen es de 7,7 y con las tiras normales no se aprecia la variación.

          o Viscosidad: Tiene que ser de tal manera que si pasamos de un tubo a otro el semen tiene que caer gota a gota sin formar hilos.

          o Licuefacción: El semen sale líquido pero al poco tiempo se forma un coágulo. Pasados unos 10-20 minutos el coágulo debido a los enzimas proteolíticos se rompe y se vuelve a transformar en un líquido viscoso. En caso de que esto no sucediera se produciría infertilidad en el hombre.

- Examen microscópico

          o [espermática]: Contamos los espermatozoides en una cámara de recuento. Para ello debemos matarlos con una solución de formol y bicarbonato con una dilución al 1/20 ya que están muy concentrados en el semen y se haría dificultoso su recuento. Los valores normales de espermatozoides son de 60-150 millones de espermatozoides por mililitro por lo que al hacer el recuento debemos tomarlo en cuenta al dar el resultado ya que la cámara mide en mm³=

          o Motilidad: Sin diluir entre porta y cubre en fresco. Debemos tener cuidado ya que tenemos que calentar un poco el porta. Los tipos que existen son:

                  § Progresiva rápida: Los que pasan rápidamente por el campo de observación, prácticamente en línea recta.

                  § Progresiva lenta: Van en línea recta de manera lenta y no consiguen atravesar el campo de observación

                  § No progresivos: Se mueven girando sobre sí mismo pero sin conseguir avanzar en el campo.

                  § Inmóviles

         o Vitalidad: En el semen normal hay una pequeña proporción de espermatozoides muertos. Esto se hace realizando una tinción con eosina en fresco. Al observar al microscopio vemos los espermatozoides muertos teñidos debido a que las membranas se vuelven permeables, mientras que los espermatozoides vivos no se tiñen.

         o Morfología: Hacemos una extensión del semen y una tinción para células. La estructura normal de un espermatozoide es la siguiente:

Pueden existir anomalías en los espermatozoides como son:

                  - Microcefaleas: Cabeza pequeña

                  - Macrocefaleas: Cabeza grande

                  - Duplicidades: Repetición de cola o cabeza

                  - Presencia de leucocitos, hematíes y células inmaduras del testículo

- Pruebas bioquímicas: No son muy importantes y el médico se encarga de ponernos las pruebas específicas del paciente. Normalmente se hace la determinación de fructosa por el método enzimático.

III.- Líquido sinovial (articular)

La membrana sinovial es la cubierta interna de las diartrosis o articulaciones sinoviales, la cual es segregado por la Sinovia que rodea la cápsula articular por su superficie interior. Este líquido forma una fina capa sobre el cartílago articular de aproximadamente 50 μm, infiltrándose en él. Las articulaciones en las que se encuentran son en los de las extremidades y las mandíbulas.

1. Funciones

- Alimentar el cartílago

- Lubricar la circulación del cartílago y del hueso

- Refrigerante

2. Composición

Su composición es la de un ultrafiltrado del plasma, con la misma composición iónica. El líquido contiene pocas proteínas y células pero es rico en Ácido hialurónico sintetizado por los sinoviocitos de tipo B.

3. Análisis

Al igual que el semen debemos hacer tres tipos de análisis:

- Macroscópicamente: Están siempre en escasa cantidad, por lo que si se extrae es porque se encuentra en exceso. Es un líquido de color ámbar transparente y viscoso (no coagula, pero forma hilos)

- Microscópicamente: El recuento celular es muy importante. Se realiza en cámaras y si es necesario centrifugar y teñir para realizar la fórmula leucocitaria. Se distinguen tres tipos de procesos:

También se pueden observar la presencia de cristales. Tienen que verse con microscopio de luz polarizada ya que algunos cristales son refringentes. Los cristales que nos podemos encontrar son:

          o Cristales de ácido úrico: Son como agujas birrefrigentes y pueden aparecer en el interior de los polimorfonucleares (gota)

          o Cristales de corticoides: Son pentagonales y suelen estar producidos por iatrogenia (Reacciones adversas producidas como consecuencia del uso de medicamentos o de un determinado tratamiento médico)

          o Cristales de pirofosfato cálcico: En enfermedades reumáticas. Son birrefringentes intra y extra celulares de forma romboidal.

- Bioquímicamente: Tiene poca importancia y lo único que suelen pedirnos es proteínas totales para diferencial el exudado del trasudado

IV.- Líquido serosos

Los líquidos serosos se encuentran entre las membranas que recubren determinados órganos. Estas membranas se encuentran plegadas sobre sí mismas dejando una cavidad virtual que cuando se hinchan se forma una cavidad real. La hoja interna se llama hoja visceral y la lámina externa se llama hoja parietal. Las membranas serosas son:

- Pleural

- Peritoneal

- Miocardio

1. Funciones

Los líquidos serosos se encargan de facilitar los movimientos de una lámina sobre otra y que no se produzcan rozamientos entre ellas.

2. Composición

Es un trasudado del plasma que se forma por exudación que hay en los capilares de la propia membrana serosa por lo que la composición será la misma o parecida a la del plasma pero sin las grandes moléculas (proteínas, células…).

En la formación de este líquido influye la presión hidrostática, la presión oncótica y la permeabilidad capilar. Cuando uno de estos se altera aumentará el líquido conocido como derrame. Las causas por la que puede suceder el derrame son:

- ↓ P. Hidrostática: En las insuficiencias cardiacas, cirrosis,…

- ↓ P. Oncótica: Por disminución de proteínas en síndromes nefróticos o por un deficiencia en la formación de proteínas en las insuficiencias hepáticas, enteropatías,…

- ↑ Permeabilidad capilar: en inflamaciones

3. Toma de muestras

Se realiza por punción y dependiendo de la zona de punción se denominan de manera diferente:

- Paracentesis: Cavidad peritoneal

- Toracocentesis: Cavidad pleural

- Periocardiocentesis: Cavidad del miocardio

4. Análisis

El análisis se realiza igual que los otros líquidos biológicos siguiendo los siguientes análisis:

- Macroscópicamente

          o Aspecto: Color ámbar pálido y trasparente. Pueden presentar tres aspectos dependiendo de la procedencia del líquido seroso:

                     § Turbio: por infección

                     § Lechoso: por presencia de linfa

                     § Hemorrágico

                     § Bilioso

- Microscópicamente: Recuento sin centrifugar en cámara y si procede se centrifuga y se realiza una extensión para observar la celularidad.

- Bioquímica: La determinación más frecuente es la de proteínas totales, ya que la cantidad de proteínas es diferente dependiendo del origen de la formación. Esto ha hecho que se distinga entre:

          o Exudados: en procesos inflamatorios hay más de 3 g/dl

          o Trasudados: Debido a alteraciones en las presiones hay menos de 3 g/dl

La determinación se hace mediante la técnica de Biuret

1. Introducción

La cromatografía engloba a un conjunto de técnicas basadas en el principio de adsorción selectiva cuyo objetivo es separar los distintos componentes de una mezcla y en algunos casos identificar estos si es que no se conoce su composición.

Las técnicas cromatográficas son muy variadas, pero en todas ellas hay una fase móvil que consiste en un fluido (gas, líquido) que arrastra a la muestra a través de una fase estacionaria que se trata de un sólido o un líquido fijado en un sólido.

Los componentes de la mezcla interaccionan en distinta forma con la fase estacionaria y con la fase móvil. De este modo, los componentes atraviesan la fase estacionaria a distintas velocidades y se van separando. Después de haber pasado los componentes por la fase estacionaria y haberse separado pasan por un detector que genera una señal que puede depender de la concentración y del tipo de compuesto.

La ventaja de esta técnica es que es una técnica muy sensible y detecta cantidades muy pequeñas.

2. Tipos

Las distintas técnicas cromatográficas se pueden dividir según cómo esté dispuesta la fase estacionaria:

- Cromatografía plana. La fase estacionaria se sitúa sobre una placa plana o sobre un papel. Las principales técnicas son:

            o Cromatografía en papel

            o Cromatografía en capa fina

La cromatografía plana es un tipo de cromatografía liquida en la que la fase estacionaria está extendida sobre la superficie de un plano y la fase móvil fluye a través de ella. La fase móvil siempre es un liquido, mientras que la fase estacionaria puede ser un liquido soportado en un sólido (cromatografía de partición) o un sólido sorbente (cromatografía de adsorción, cambio iónico o exclusión). El flujo de la fase móvil se produce:

           o Por capilaridad (cromatografia horizontal y ascendente)

           o Por capilaridad y gravedad (cromatografia descendente)

Esta clase de cromatografía es considerada la más simple de todas las técnicas cromatográficas. La diferencia principal con la cromatografía en columna es de tipo técnico, es decir, difieren en la forma de soportar la fase estacionaria. En lo que se refiere al fenómeno en que se fundamenta la separación, es el mismo para ambas técnicas

En la cromatografía plana, la disolución de la muestra a separar se sitúa sobre el plano que contiene la fase estacionaria en forma de mancha, o a veces de banda, a corta distancia de uno de los extremos de dicho plano. Una vez seca la mancha o banda, el extremo del plano próximo a la misma se pone en contacto con la fase móvil, manteniendo todo el sistema cromatográfico en una cámara cerrada. La separación se produce por migración diferencial de los componentes de la muestra en la dirección en que se mueve la fase móvil.

Generalmente, a diferencia de la cromatografía en columna, en cromatografía plana el analito no abandona el lecho cromatográfico, de forma que el proceso se detiene cuando la fase móvil ha alcanzado una determinada zona del plano. Para ponerlo de manifiesto utilizamos un revelador (tinción).

Podemos cuantificar esta técnica a partir de la densitometría, si la placa es una placa mineral, raspamos en la zona de la sustancia de estudio, y por elución, medimos por cromatografía.

- Cromatografía en columna. La fase estacionaria se sitúa dentro de una columna. Según el fluido empleado como fase móvil se distinguen:

          o Cromatografía de líquidos

          o Cromatografía de gases

La cromatografía de gases es útil para gases o para compuestos relativamente volátiles, lo que incluye a numerosos compuestos orgánicos.

Dentro de la cromatografía líquida destaca la cromatografía líquida de alta resolución (HPLC, del inglés High Perfomance Liquid Chromatography), que es la técnica cromatográfica más empleada en la actualidad.

La cromatografía en columna consta de un inyector por el cual introducimos la muestra y que va a dar a la columna de cromatografía, una vez fijada la muestra a la fase fija la bomba de alta presión se pone en marcha y expulsa de manera constante el eluyente que pasa por la columna arrastrando las partículas de cada sustancia según el tipo de cromatografía y el mecanismo que sigamos. La muestra que se va arrastrando de la columna pasa a un detector por donde se va eliminando y que manda los datos a un ordenador que va dibujando la gráfica de la técnica.

En la gráfica se observa la concentración de las sustancias mediante picos y se compara con un patrón de referencia. La cuantificación se podría hacer directamente a través de la gráfica de la siguiente manera:

- A través de la altura de los picos

- Del área de las curvas (lo más utilizado)

Esta fórmula también se utiliza en cromatografía plana y en vez de utilizar la distancia de los picos de origen de la muestra es la distancia al borde final del eluyente; y en vez de la distancia entre los dos puntos el diámetro (a=Φ)

3. Mecanismos

- Adsorción: El sólido adsorbe al componente que inicialmente estaba en fase móvil (liquida o gaseosa). Se basa en la adherencia de determinadas moléculas a diferentes fuerzas. La fase fija es una sustancia absorbente como por ejemplo el carbón activo, sílice, etc.

- Intercambio iónico: el sólido es un cambiador de iones (fuerzas electrostáticas) y se vasa en la afinidad de iones en disolución por iones de carga eléctrica contraria, que están presentas en la fase estacionaria. En ella, por tanto, la principal fuerza de interacción entre los analitos y la fase fija es la electrolítica, es decir, la atracción de cargas opuestas.

Tenemos una fase fija donde existen moléculas con una carga y añadiendo la muestra de cargas contrarias se atraen. Al añadir el eluyente que tienen la misma carga que la muestra compite por aguantarse al gel y se van eliminando las moléculas dependiendo de la intensidad de la carga. Dependiendo de la carga que se utilice en la fase fija tenemos:

         o C. Intercambio catiónico: Grupos negativos en fase fija

         o C. Intercambio aniónico: Grupos positivos en fase fija.

- Exclusión molecular: El sólido es un gel formado por polímeros no iónicos porosos que retienen a las moléculas de soluto según su tamaño. De modo que las sustancias que son más grandes que los poros se eliminan las primeras con el eluyente.

 

- Cromatografía de afinidad: es un tipo especial de cromatografía de adsorción en la que un sólido tiene enlazado un llamado ligando de afinidad que puede ser por ejemplo, un indicador enzimático o un anticuerpo.

- Partición: Consiste en la distinta solubilidad que tienen las moléculas.

Si es un líquido que se encuentra soportado en un sólido inerte, se trata de la Cromatografía de partición. El soluto se reparte entra la fase móvil (liquido o gas) y la fase estacionaria.